بررسی اثر عصاره‌ی جینسنگ (پاناکس جینسنگ) بر ساختار دیواره‌ی روده در قزل‌آلای رنگین‌کمان (Oncorhynchus mykiss): مطالعه‌ی هیستومورفومتریک و بیوشیمیایی

محورهای موضوعی : فصلنامه زیست شناسی جانوری

علی پرچمی ¹ , وحید پویاپور ²

1 - گروه علوم پایه دانشکده‌ی دامپزشکی، دانشگاه شهرکرد، شهرکرد، ایران
2 - گروه علوم پایه دانشکده‌ی دامپزشکی، دانشگاه شهرکرد، شهرکرد، ایران

تاریخ دریافت : 1401/07/28 تاریخ پذیرش : 1401/09/01 تاریخ انتشار : 1402/06/01

کلید واژه: قزل‌آلای رنگین‌کمان, هیستومورفومتری, هیستوشیمی, عصاره‌ی جینسنگ, روده‌,

چکیده مقاله :

هدف از پژوهش حاضر، ارزیابی اثر عصاره‌ی ریشه‌ی گیاه جینسنگ (پاناکس جینسنگ) بر ویژگی‌های هیستومورفومتریک و بیوشیمیایی دیواره‌ی روده در قزل‌آلای رنگین‌کمان بود. پژوهش در بازه‌ی زمانی ۶۰ روزه در ۴ تیمار آزمایشی با سه تکرار صورت گرفت. در هر تکرار، به‌صورت اتفاقی ۶۰ قطعه بچه‌ماهی با میانگین وزنی ۱۵ گرم توزیع شد. گروه‌های آزمایشی به‌ترتیب با ۰، ۱۰۰، ۱۵۰ و ۲۰۰ گرم در کیلوگرم جیره، عصاره‌ی آبی جینسنگ تغذیه شدند. نمونه‌های بافتی از نواحی ابتدایی و انتهایی روده با هماتوکسیلین و ائوزین، اسید پریودیک شیف و آلسین بلو رنگ‌آمیزی شدند. نتایج نشان داد که با افزایش میزان جینسنگ تا ۱۵۰ گرم در هر ۱۰۰ کیلوگرم جیره در هر دو ناحیه‌ی ابتدایی و انتهایی روده، بلندای تاخوردگی‌های روده‌ای و سطح جذب به‌طور معنادار افزایش می‌یابد (05/0 > p). ضخامت لایه‌ی ماهیچه‌ای در گروه‌های دریافت‌کننده‌ی جینسنگ تفاوت آماری معناداری با گروه شاهد نشان نمی‌دهد (05/0 < p). شمار تام سلول‌های جامی و نیز شمار سلول‌های تولیدکننده‌ی موکوس اسیدی در بخش انتهایی روده در گروه‌های دریافت‌کننده‌ی جینسنگ در مقایسه با گروه شاهد به‌طور معنادار افزایش یافته (05/0 > p). اما میزان این سنجه‌ها در بخش ابتدایی روده تفاوت آماری معناداری در گروه‌های دریافت‌کننده‌ی جینسنگ با گروه شاهد نشان نمی‌دهد (05/0 < p). افزایش شمار تام سلول‌های جامی در گروه‌های دریافت‌کننده‌ی جینسنگ در بخش انتهایی روده به‌طور عمده به‌دلیل افزایش شمار سلول‌های جامی مولد موسین‌های اسیدی در این بخش از روده بوده و شمار سلول‌های تولیدکننده‌ی موسین‌های خنثی و مختلط تفاوت آماری معناداری در گروه‌های دریافت‌کننده‌ی جینسنگ با گروه شاهد نشان نمی‌دهند (05/0 < p).

چکیده انگلیسی:

The aim of the present study was to evaluate the effect of ginseng root extract (Panax ginseng) on the histomorphometric and biochemical characteristics of the intestinal wall in rainbow trout. Study carried out during 60 days within 4 experiments, each with 3 replicates. In each replication 60 pcs of fry with average weight of 15gr. were randomly distributed. The experimental groups were fed with aqueous extract of P. Ginseng at 100, 150 & 200 gr./kg. diet respectively. Tissue samples from the proximal and distal segments of the intestine were stained by hematoxylin and eosin, periodic acid Schiff and alcin blue stains. Results showed that by increasing the amount of ginseng up to 150 grams per 100 kg of diet, the length of the intestinal folds and the absorption area significantly increased in both the proximal and distal segments of the intestine (p < 0.05). The thickness of the muscular layer in the groups receiving ginseng did not show a statistically significant difference compared to the control group (p > 0.05). The total number of goblet cells as well as the number of acid mucus producing cells in the distal part of the intestine in the groups receiving ginseng increased significantly compared to the control (p < 0.05), but the amount of these parameters in the proximal part of the intestine did not show a statistically significant difference in the groups receiving ginseng compared to the control group (p > 0.05). The increase in the total number of goblet cells in the groups receiving ginseng in the distal part of the intestine is mainly due to the increase in the number of goblet cells producing acidic mucins in this part of the intestine, and the number of cells producing neutral and mixed mucins did not show a statistically significant difference in the groups receiving ginseng compare to the control group (p > 0.05).   .

منابع و مأخذ:

Akhlaghi M., Brojerdi M. 1999. Anesthetic effect of Clove tree and LC₅₀ determination in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Journal of Veterinary Research, 54(2):49-52. [In Persian].

2. Ashraf M.A., Goda S. 2008. Effect of Dietary Ginseng Herb (Ginsana_G115) Supplementation on Growth, Feed Utilization, and Hematological Indices of Nile Tilapia, Oreochromisniloticus (L.), Fingerlings, Journal of the World Aquaculture Society, 39(2):134-137.


3. Birchenough G.M.H., Johansson M.E.V., Gustafsson J.K., Bergstro J.H., Hansson G.C. 2015. New developments in goblet cell mucus secretion and function, Mucosal Immunology, 8:712-719.


4. Bosi G., Arrighi S., di Giancamillo A., Domeneghini C. 2005. Histochemistry of glycoconjugates in mucous cellsof Salmo trutta uninfected and naturally parasitized with intestinal helminths. Diseases of aquatic organisms, 64:45-51.


5. Chirde S.G., Gadhikar Y. 2014. Histology A. histochemical and ultrastructural studies on intestine of Indian catfish, Clari­us batrachus (Linn 1758). Asian Journal of Biology and Bio­technology, 3(1):1-9.


6. Choi K. 2008. Botanical characteristics, pharmacological effects and medicinal components of Korean Panax ginseng C A Meyer. Acta Pharmacologica Sinica, 29(9): 1109-1118.


7. Çinar K., Senol N. 2006. Histological and histochemical characterization of the mucosa of the digestive tract in flower fish (Pseudophoxinus antalyae). Anatomia, Histologia, Embryologia, 35:147-151.


8. Costa C.A., Tanimoto A., Quaglio A.E., Almeida L.D., Jr Severi J.A., Di Stasi L.C., 2015. Anti-inflammatory effects of Brazilian ginseng (Pfaffia paniculata) on TNBS induced intestinal inflammation: experimental evidence. International Immunopharmacology, 28:459-469.


9. Deplancke B., Gaskins H.R. 2001. Microbial modulation of innate defense: globet cells and the intestinal mucus layer. American Journal of Clinical Nutrition, 73: 1131–1141.


10. Enss M.L., Grosse-Siestrup H., Schmidt-Wittig U., Gärtner K. 1992. Changes in colonic mucins of germ free rats in response to the introduction of a "normal" rat microbial flora. Rat colonic mucin. Journal of Experimental Animal Science, 35:110-119.


11. Francis G., Kerem Z., Makkar H.P.S., Becker K. 2002. The biological action of saponins in animal systems: a review. British Journal of Nutrition, 88: 587–605.


12. Fuller R. 1992. History and development of probiotics. Pages 1-18. Chapman and Hall, London, UK.


13. Go´ngora C.M., 1998. Mecanismos de resisten ciabacteriana ante la medicina actual. The McGraw-Hill Companies Basauri, Madrid, Spain.


14. Jang D.J., Lee M.S., Shin B.C., Lee Y.C., Ernst E. 2008. Red ginseng for treating erectile dysfunction: a systematic review. British Journal of Clinical Pharmacology, 66(4):444-450.


15. Khojasteh S.M.B., Sheikhzadeh F., Mohammadnejad D., Azami A., 2009. Histological, histochemical and ultrastructural study of the intestine of rainbowtrout (Oncorhynchus mykiss). World Applied Sciences Journal, 6:1525-1531.


16. Kim J.J., Khan W.I. 2013. Goblet cells and mucins: Role in innate defense in enteric infections. Pathogens, 2:55-70.


17. Kisielinski K., Willis S., Prescher A., Klosterhalfen B., Schumpelick V. 2002. A simple new method to calculate small intestine absorptive surface in the rat. Clinical Exprimental Medicine, 2: 131-135.


18. Krauthammer T.D., Kullen M.J. 1999. Selection and design of probiotics. International Journal of Food Microbiology, 50:45-57.


19. Li S.S., Qi Y.L., Chen L.X., Qu D., Li Z.M., Gao K., Chen J.B., Sun Y.S. 2019. Effects of Panax ginseng polysaccharides on the gut microbiota in mice with antibiotic-associated diarrhea. Intnational Journal of Biological Macromolecules, 124:931–937.


20. Luo, Z., Xu, W., Zhang, Y., Di, L., Shan, J., 2020. A Review of Saponin Intervention in Metabolic Syndrome Suggests Further Study on Intestinal Microbiota. Pharmacological Research, 160-165.


21. McDole J.R., Wheeler L.W., McDonald, K.G., Wang B., Konjufca V., Knoop K.A., Newberry R.D., Miller M.J. 2012. Goblet cells deliver luminal antigen to CD103+ dendritic cells in the small intestine. Nature, 483:345-349.


22. 22. Ray A.K., Ringø E. 2014. The gastrointestinal tract of fish. In: Aquaculture Nutrition: Gut Health, Probiotics and Prebiotics (), Pages 1–13 in Merrifield: Wiley-Blackwell Publishing, Oxford, UK.


23. Sun Y. 2011. Structure and biological activities of the polysaccharides from the leaves, roots and fruits of Panax ginseng C.A. Meyer: an overview. Carbohydrate Polymers, 85:490-499.


24. Tibbetts I.R. 1997. The distribution and function of mucous cells and their secretions in the alimentary tract of Arrham­phus sclerolepis krefftii. Journal of Fish Biology, 50(4):809-820.


25. Yang, S.H., Seo, S.H., Kim, S.W., et al., 2006. Effect of ginseng polysaccharide on the stability of lactic acid bacteria during freeze-drying process and storage. Archives of Pharmacological Research, 29: 735 740.


26. Yang S., Yu M. 2021. Role of Goblet Cells in Intestinal Barrier and Mucosal Immunity. Journal of Inflammation Research.,14: 3171–3183.