بررسی اثر حفاظتی تیموکینون بر روند اسپرماتوژنزیس و شاخص های عملکردی اسپرم در موش سفید صحرایی دریافت‌کننده تری سیکلازول

محورهای موضوعی : فصلنامه زیست شناسی جانوری

رامونا کسری کرمانشاهی ¹ , اسماعیل فتاحی ² , سید غلامعلی جورسرایی ³ , سهراب کاظمی ⁴ , مریم غلامی تبار طبری ⁵

1 - دانشجو زیست شناسی،واحد آیت الله آملی،دانشگاه آزاد اسلامی،آمل،ایران
2 - زیست شناسی، دانشکده علوم پایه ، دانشگاه آزاد آیت الله آملی، آمل ، ایران
3 - استاد گروه علوم تشریح. فلوشیپ IVF، گروه علوم تشریح، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی بابل، بابل، ایران
4 - مرکز تحقیقات بیولوژی سلولی و مولکولی، پژوهشکده سلامت، دانشگاه علوم پزشکی بابل، بابل، ایران
5 - مرکز تحقیقات باروری سالم، واحد ساری، دانشگاه آزاد اسلامی، ساری، ایران

تاریخ دریافت : 1401/04/22 تاریخ پذیرش : 1401/04/22 تاریخ انتشار : 1401/12/01

کلید واژه: آنتی‌اکسیدانت, تیموکینون, اسپرماتوژنزیس, سم تری سیکلازول,

چکیده مقاله :

ترکیبات دارای خاصیت آنتی‌اکسیدانی مانند تیموکینون، به میزان قابل‌توجهی مانع از ایجاد تغییرات حاصل از اثر مواد شیمیایی سمی نظیر تری سیکلازول روی ارگان های احشایی می‌شوند. لذا این مطالعه به‌منظور امکان به‌کارگیری تیموکینون جهت ممانعت از اثرات مخرب سم‌تری سیکلازول بر روند اسپرماتوژنزیس رت های نر انجام شد. در این مطالعه تجربی، تعداد 42 سر موش صحرایی نر به‌طور تصادفی به 7 گروه شامل: گروه کنترل (بدون دریافت دارو)، گروه شم (محلول 10 درصد توئین 80)، گروه 20 میلی گرم بر کیلوگرم تری سیکلازول، گروه آزمایشی 10 میلی گرم بر کیلوگرم تیموکینون، گروه آزمایشی 20 میلی گرم بر کیلوگرم تیموکینون، گروه آزمایشی تری سیکلازول 20 و تیموکینون 10 و گروه تری سیکلازول 20 و تیموکینون 20 تقسیم شدند. در پایان دوره ی تیمار، با تهیه برش های بافتی از بیضه، سلول های مسیر اسپرماتوژنز در واحد سطح مورد ارزیابی قرار گرفتند. طبق یافته ها، میانگین تعداد و تحرک اسپرم و تعداد سلول‌های اسپرماتوگونی در گروه های تیموکینون 20 و گروه تیموکینون 10 در مقایسه با گروه تری سیکلازول افزایش معنی داری را نشان داد (05/0p < )؛ اما تعداد سلول های لیدیگ در گروه های تیموکینون 20 و گروه تیموکینون 10 در مقایسه با گروه تری سیکلازول کاهش معنی‌داری را نشان داد (05/0p < ). نتایج مطالعه نشان داد که تیموکینون به‌عنوان یک آنتی‌اکسیدان قوی می‌تواند سمیت ناشی از تری سیکلازول بر فرآیند اسپرماتوزنز را تا حدودی جبران نماید.

چکیده انگلیسی:

Compounds with antioxidant properties such as thymoquinone (TQ) significantly prevent changes resulting from the effect of toxic chemicals such as tricyclazole on visceral organs. Therefore, this study was conducted in order to use thymoquinone to prevent the destructive effects of tricyclazole on the process of spermatogenesis in male rats. In this experimental study, 42 male rats were randomly divided into 7 groups including: control group (no drug), sham group (10% solution of Tween 80), tricyclazole (20 mg/kg) group, thymoquinone (10 mg/kg) group, thymoquinone (20 mg/kg) group, tricyclazole (20 mg/kg) + thymoquinone (10 mg/kg) group, and tricyclazole (20 mg/kg) + thymoquinone (20 mg/kg) group. At the end of the treatment period, by preparing tissue sections from the testis, the cells of the spermatogenesis pathway were evaluated per unit area. According to the findings, the average number and motility of sperm and the number of spermatogonial cells in the thymoquinone 20 and thymoquinone 10 groups showed a significant increase compared to the tricyclazole group (p < 0.05); However, the number of Leydig cells in the thymoquinone 20 and thymoquinone 10 groups showed a significant decrease compared to the tricyclazole group (p < 0.05). The results of the study showed that thymoquinone, as a strong antioxidant, can partially compensate for the toxicity caused by tricyclazole on the spermatogenesis process.

منابع و مأخذ:

1. Abdul-Rahman S., Mohamed Anwar Norul A., Basha Shaik S., Kamarzaman S. 2014. Impact of thymoquinone supplementation on immobilisation stress-induced. Journal of Applied and Natural Science, 6(1): 1-5.


2. Abdul-Rahman S., Kamarzaman S. 2017. Prophylactic Effects of Nigella sativa Extract and Thymoquinone against Cyclophosphamide-induced Sperm Head Abnormalities and Chromatin Instability in Mice, Bulletin of Environment, Pharmacology and Life Sciences, 6(10):5-16.


3. Al-Sa'aidi J.A.A, Al-Khuzai A.L.D, Al-Zobaydi N.F.H. 2009. Effect of alcoholic extract of Nigella sativa on fertility in male rats, Iraqi Journal of Veterinary Sciences, 23(Supplement II): 123-128.


4. Alimondegari M., Karimi M., Razeghi Nasrabad H. 2021. Infertility and Coping Strategies in Men and Women Referring to Yazd Institute of Reproductive Sciences. Journal of Family Research, 16(4):473-492 [In Persian].


5. Allen J., Wolf D., George M., Hester S., Sun G., Thai S., Delker D., Moore T., Jones C., Nelson G., Roop B., Leavitt S., Winkfield E.,Ward W., and Nesnow S., 2006. Toxicity profiles in mice treated with hepatotumorigenic and non-hepatotumorigenic triazole conazole fungicides: propiconazole, triadimefon, and myclobutanil. Toxicologic Pathology, 34(7): 853-862.


6. Bashandy S. 2007. Effect of Fixed Oil of Nigella Sativa on male fertility in normal and hyperlipidemic rats. International Journal of Pharmacology, 3(1):27-33.


7. El-Ebiary Ahmad A., Shahin Marwa M., Hantash Ehab M. 2015. Protective role of Nigella sativa oil on spermatogenesis and testicular structure in cadmium intoxicated rats. Ain Shams Journal of Forensic Medicine and Clinical Toxicology, 25: 71-80.


8. Fattahi E., Mousavi Moghadam M., Khanbabaei R. 2015. The Effect of Tricyclazole on Testosterone Changes and Testicular Structure in Mice. Journal of Babol University of Medical Sciences, 17(2):43-49. [In Persian]


9. Fazelian K., Dashti G., Golshan Iranpour F., Baghazadeh S. 2014. Effects of Low Doses of Exogenous Thymoquinone on Sperm Motility and Viability of Normozoospermic Men. Journal of Isfahan University of Medical Sciences, 32(287): 776-783. [In Persian]


10. ­­Gali-Muhtasib­­­­ H., El-Najjar N., Schneider - Stock R. 2006. The medicinal potential of Black seed (Nigella Sativa) and its components. Advanced Phytomedicine, 2: 133-153.


11. Goetz A.K., Ren H., Schmid J.E., Blystone C.R., Thillainadarajah I., Best D.S., Nichols H.P., Strader L.F., Wolf D.C., Narotsky M.G., Rockett J.C., Dix D.J. 2007. Disruption of testosterone homeostasis as a mode of action for the reproductive toxicity of triazole fungicides in the male rat. Toxicological Sciences, 95(1):227-239.


12. Gribins K.M. 2011. Reptilian spermatogenesis, a histological and ultrastructural perspective. Spermatogenesis, 1(3): 250-269.


13. Hester S., Moore T., Padgett WT., Murphy L., Wood , Nesnow S. 2012. The hepatocarcinogenic conazoles: cyproconazole, epoxiconazole, and propiconazole induce a common set of toxicological and transcriptional responses. Toxicological Scieces, 127(1):54-65.


14. Khaki A., Nouri M., Fathi Azad F., Khaki A.A. 2008. Evaluation of Zingiber Officinalis and Allium Cepa on Spermatogenesis in Rat. Journal of Tabriz University of Medical Sciences, 30: 53-58.


15. Knez J. 2013. Endocrine-disrupting chemicals and male reproductive health. Reprod Biomed Online, 26(5):440-448.


16. Labadie P., Budzinski H. 2006. Alteration of steroid hormone balance in juvenile turbot (Psetta maxima) exposed to nonylphenol, bisphenol A, tetra bromodiphenyl ether 47, diallylphthalate, oil, and oil spiked with alkylphenols. Archives of Environmental Contamination and Toxicology, 50(4):552-561.


17. Marotta F., Tiboni G.M. 2010. Molecular aspects of azoles-induced teratogenesis. Expert Opinion on Drug Metabolism and Toxicology, 6:461-482.


18. Mohammadi F., Nikzad H., Taherian A., Amini Mahabadi J., Salehi M. 2013. Effects of herbal medicine on male infertility. Anatomical Sciences, 10: 3-16.


19. Mohammad Mukhallad A., Mohamad Mohamad MJ., Dradka H. 2009. Effects of Black Seeds (Nigella sativa) on Spermatogenesis and Fertility of Male Albino Rats, Research Journal of Medicine and Medical Sciences, 4(2): 386-390.


20. Osama Badary A., Abdel-Naim A.B., Abdel-Wahab M.H., Hamada F.M. The influence of thymoquinone on doxorubicin – induced hyperlipidemic nephropathy in rats. Toxicology, 143: 219-226.


21. Ravi Kumar P., Kanniapan M., Mathuram L.N., Selvasubramanian S., Murali Manohar B., Sriram P. 2011. Hexaconazole induced change in the histological architecture of male and female reproductive system in Research Journal of Pharmacology, 5(2):9-13.


22. Salem M.L. 2005. Immunomodulatory and therapeutic properties of the Nigella sativa L. seed. International Journal of Immunopharmacology, 5(13-14):1749-1770.


23. Sancho E., Fernández-Vega C., Villarroel M.A., Andreu-Moliner E., Ferrando M.A. 2009. Physiological effects of tricyclazole on zebrafish (Danio rerio) and post-exposure recovery. Comparative Biochemistry and Physiology C: Toxicology and Pharmacology, 150(1):25-32.


24. Shariatzadeh M., Keikha L. 2015. Evaluation of the Protective Effect of Nigella Sativa Oil on Testicular Tissue and Sperm Parameters in Adult NMRI Mice Treated with Para-nonylphenol. Journal of Shahid Sadoughi University of Medical Sciences, 23(2):1927-1944. [In Persian]


25. Sharma N.K., Ahirwar D., Jhade D., Gupta S. 2009. Medicinal and pharmacological potential of Nigella A review. Ethnobotanical Review, 13: 946-955.


26. Tawfeek F.K.H., Ahmed S.M., Kakel S.J. 2006. Effect of Nigella sativa Oil Treatment on the Sex organs and Sperm Charactors in Rats Exposed to Hydrogen Mesopotamia Journal of Agriculture, 34(1):1-7.


27. Tully D.B., Bao W., Goetz A.K., Blystone C.R., Ren , Schmid JE., Strader LF., Wood C.R., Best DS., Narotsky MG. 2006. Gene expression profiling in liver and testis of rats to characterize the toxicity of triazole fungicides. Toxicology and Applied Pharmacology, 215: 260-273.