ارزیابی اثر حفاظتی کرایزین بر روند اسپرماتوژنزیس و پارامترهای اسپرم در موش‌های سفید صحرایی دریافت‌کننده سم دیازینون

محورهای موضوعی : فصلنامه زیست شناسی جانوری

فاطمه مجیبی ¹ (گروه زیست‌شناسی، واحد آیت‌الله آملی، دانشگاه آزاد اسلامی، آمل، ایران)
غلامعلی جورسرایی ² (گروه علوم تشریح، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی بابل، بابل، ایران)
اسماعیل فتاحی ³ (گروه زیست‌شناسی، واحد آیت‌الله آملی، دانشگاه آزاد اسلامی، آمل، ایران)
سهراب کاظمی ⁴ (مرکز تحقیقات بیولوژی سلولی و مولکولی، پژوهشکده سلامت، دانشگاه علوم پزشکی بابل، بابل، ایران)
مریم غلامی تبار طبری ⁵ (مرکز تحقیقات باروری سالم، واحد ساری، دانشگاه ازاد اسلامی، ساری، ایران)

تاریخ دریافت : 1401/06/03 تاریخ پذیرش : 1401/06/24 تاریخ انتشار : 1402/03/01

کلید واژه: سم دیازینون, پارامترهای اسپرم, اسپرماتوژنزیس, کرایزین,

چکیده مقاله :

ترکیباتی نظیر کرایزین، مانع از ایجاد تغییرات حاصل از اثر مواد سمی نظیر دیازینون روی ارگان های احشایی شده و تحقیق حاضر، بمنظور اثر حفاظتی کرایزین بر روند اسپرماتوژنزیس با مداخله سم دیازینون انجام شد. در این مطالعه تجربی، تعداد 42 سر موش صحرایی نر نژاد ویستار با وزن تقریبی 250-180 گرم انتخاب و بطور تصادفی به هفت گروه شامل: کنترل، شم، دیازینون با غلظت 20 میلی گرم بر کیلوگرم وزن بدن، کرایزین با غلظت 10، کرایزین با غلظت 20، کرایزین با غلظت 10 و دیازینون با غلظت 20 و کرایزین با غلظت 20 و دیازینون با غلظت20 ملی گرم بر کیلوگرم تقسیم شدند. در پایان دوره ی تیمار، با پروسه تهیه بافت، با نرم افزارMotic ، تعداد رده های سلولی در واحد سطح مشخص و در گروه‌های مختلف با یکدیگر مقایسه گردید. بین میانگین تعداد اسپرم و تحرک اسپرم در گروه شم و کنترل با گروه‌های دیازینون و کرایزین با غلظت 10 و دیازینون با غلظت 20 (001/0p < ) و گروه دیازینون با غلظت 20 و کرایزین با غلظت 20 (01/0p <) تفاوت معنی داری به صورت کاهشی وجود داشت. همچنین مرگ و میر اسپرم در در گروه شم و کنترل با گروه‌های آزمون دیازینون، کرایزین با غلظت 10 و دیازینون با غلظت 20 و دیازینون با غلظت 20 و کرایزین با غلظت (001/0p < )، تفاوت معنی داری به صورت افزایشی وجود داشت. نتایج نشان داد که در میانگین تعداد اسپرم، تحرک اسپرم، مرگ و میر اسپرم، مورفولوژی اسپرم، تعداد سلول‌های لیدیگ، تعداد سلول‌های ژرمینال، تعداد اسپرماتوسیت‌های اولیه و ثانویه و تعداد اسپرماتید در گروه شم و کنترل با بعضی گروه‌های آزمون تفاوت معنی داری وجود داشته، بنابراین کرایزین به عنوان یک آنتی اکسیدان قوی می تواند سمیت ناشی از سم دیازینون را جبران کند.

چکیده انگلیسی:

Compounds such as chrysin inhibit the effects of toxic substances such as diazinon on visceral organs and the present study was performed to evaluate the protective effect of chrysin on spermatogenesis by interfering with diazinon toxin. In this experimental study, 42 male Wistar rats weighing approximately 250-180 g were selected and randomly divided into 7 groups including control, sham, diazinon with a concentration of 20 mg/kg BW, chrysin with a concentration of 10, Chrysin with a concentration of 20 mg/kg, chrysin with a concentration of 10 mg/kg and diazinon with a concentration of 20 mg/kg and chrysin with a concentration of 20 mg/kg and diazinon with a concentration of 20 mg/kg were divided. At the end of the treatment period, with the process of tissue preparation, with Motic software, the number of cell lines per unit area was determined and compared with each other in different groups. There was a significant difference between the mean number of sperm count and sperm motility in the Sham and Control groups with Diazinon and DC10 groups (p < 0.001), and DC20 groups (p < 0.01). Also, there was a significant difference in sperm mortality in Shm and Cnt groups with Diazinon, DC10 and DC20 test groups (p < 0.001). The results showed that there was a significant difference in the mean number of sperm count, sperm motility, sperm mortality, sperm morphology, number of Leydig cells, number of germ cells, number of primary and secondary spermatocytes, and number of spermatids in Sham and Control groups compared to some test groups. Thus, CHR as a potent antioxidant can compensate for the toxicity of Diazinon toxin.   .

منابع و مأخذ:

1. Adamkovicova M., Toman R.,  Martiniakova M.,  Omelka R. Sperm motility and morphology changes in rats exposed to cadmium and diazinon.  Reproductive Biology and Endocrinology, 14:42.


2. Al-Attar A.M., Abu Zeid I. 2012. Effect of Tea (Camellia sinensis) and Olive (Olea europaea L.) Leaves Extracts on Male Mice Exposed to Diazinon. BioMed Research International, 2013:461415.


3. Al-AttarM., Elnaggar M.H.R., Almalki E.A. 2017. Protective effect of some plant oils on diazinon induced hepatorenal toxicity in male rats. Saudi Journalof Biological Sciences, 24(6): 1162–1171.


4. Al-Otaibi A.M., Al-Balawi H.F.A., Ahmad Z., Suliman E.M. 2018. Toxicity bioassay and sub-lethal effects of diazinon on blood profile and histology of liver, gills and kidney of catfish, Clarias gariepinus. Brazilian Journal of Biology, 79:326-336.


5. Anbarkeh F.R., Nikravesh M.R., Jalali M., Sadeghnia H.R., Sargazi Z. 2019. The effect of diazinon on cell proliferation and apoptosis in testicular tissue of rats and the protective effect of vitamin E. International Journal of Fertility and Sterility, 13(2):


6. Bakhtiary Z., Shahrooz R., Ahmadi A., Malekinejad H., Mostafavi M. 2014. Study of protective effects of crocin on testicular histomorphomtryand serological parameters incyclophosphosphamide on treated adult adult mice. Studies in Medical Sciences, 25(7):663-673. [In Persian]


7. Boussabbeh M., Ben Salem I., Hamdi M. Diazinon, an organophosphate pesticide, induces oxidative stress and genotoxicity in cells deriving from large intestine. Environmental Science and Pollution Research, 23(3):2882–2889.


8. Ciftci O., Ozdemir I., Aydin M., Beytur A. 2012. Beneficial effects of chrysin on the reproductive system of adult male rats. Andrologia, 44(3):181-18


9. Duysen E.G., Cashman J.R., Schopfer L.M. Differential sensitivity of plasma carboxylesterase-null mice to parathion, chlorpyrifos and chlorpyrifos oxon, but not to diazinon, dichlorvos, diisopropy lfluorophosphate, cresyl saligenin phosphate, cyclosarin thiocholine, tabun thiocholine, and carbofuran. Chemico-Biological Interactions, 195(3): 189-198.


10. El-Sisi A., El-Sayad M.E, Abdelsalam N.M. 2017. Protective effects of mirtazapine and chrysin on experimentally induced testicular damage in rats. Biomedicine and Pharmacotherapy, 2017:1059-1066.


11. Elexpe A., Sánchez-Sánchez L., Tolentino-Cortez T., Astigarraga E., Torrecilla M., Barreda-Gómez G. 2022. Analysis of Mitochondrial Function in Cell Membranes as Indicator of Tissue Vulnerability to Drugs in Humans. Biomedicines, 10(5):


12. Ghasemi R., MirMohammadrezaei F., Nasri S., Nili Ahmadabadi A. 2019. Effect of Hydroalcoholic Extract of Apium graveolens on Semen Quality and Spermatogenesis in Subchronic Toxicity by Diazinon in Rats. Journal of Ilam University of Medical Sciences, 26(5):61-70. [In Persian]


13. Khaksar M.R., Rahimifard M., Baeeri M. Protective effects of cerium oxide and yttrium oxide nanoparticles on reduction of oxidative stress induced by sub-acute exposure to diazinon in the rat pancreas. Journal of Trace Elements in Medicine and Biology, 41:79-90. [In Persian]


14. Maliji G., Jorsaraei S.Gh., Zabihi E., Fattahi E., Rezaie E., Sohan-Faraji A. 2014. Diazinon alters sex hormones, Interferon-gamma, Interleukin-4 and 10 in male Wistar rats. Journalof Gorgan University of Medical Sciences, 16(1):22-28. [In Persian]


15. Mohammadi Meyabadi R, Heydari Nasrabadi M, Khodarahmi P, Siadat S. 2014. The Effect of Hydroalcoholic Castor Bean Extract on Spermatogenesis in Mice. JournalMedicinal Plants Research, 13(50):35-44. [In Persian]


16. Momayez-Haghighi M., Nasiraei-Moghadam S., Sadoughi M. 2020. The Study of the Effects of Diazinon on Histomorphometrical Changes of Hippocampus in the Balb/c Mouse Embryo. Journal of Animal Biology, 12(2): 69-82.


17. Najafi G.R., Salami S., Karimi A. 2010. The effect of the effect of diazinon on testicular tissue in adult male rat: A histopathological study. Studies in Medical Sciences. 20(4):313-319. [In Persian]


18. Norouzi M., Rezazadeh S.L, Moghadamnia A.A, Bahramifar N. 2018. The effect of chrysin nanoparticles in preventing the growth of Mcf-7 cancer c Journalof Babol University of Medical Sciences; 20(10):56-62. [In Persian]


19. Parthasarathy S., Sagar A.L., Siddavattam D. 2022. Biodegradation of organophosphates: biology and biotechnology.In Microbial Biodegradation and Bioremediation,2022: 145-159.


20. Pordel M., Baharara J., Amini E. 2017. Cytotoxic and antioxidant effect of chrysin on neonate mouse spermatogenic stem cells. journalof Kashan University of Medical Sciences, 21(2):126-133. [In Persian]


21. Rahimi Anbarkeh F., Nikravesh M.R., Jalali M., Soukhtanloo M. Protective effects of alpha-lipoic acid on diazinon-induced renal toxicity in rats: an immunohistochemistry study. Toxin Reviews, 41(1):1-10.


22. Saffari, S., Torabzadeh, P., Rastgar Gharahshiran, S. 2019. The Teratogenic Effects Pesticide of Diazinon On the development of Balb/C Mouse Embryos 3Th to 6Th Days Of Pregnancy. journal of veterinary clinical research, 9(2):135-146.


23. Spina E., Simundza J., Incassati A., Chandramouli A., Kugler M.C., Lin Z., Cowin P. 2022. Gpr125 is a unifying hallmark of multiple mammary progenitors coupled to tumor latency. Nature communications, 13(1):1-17.


24. Toman R., Hluchy S., Cabaj M. Effect of separate and combined exposure of selenium and diazinon on rat sperm motility by computer assisted semen analysis. Journal of Trace Elements in Medicine and Biology, 38:144-149.


25. Zhang D., Xie D., Lin X., Ma1 L., Chen J., Zhang D. The transcription factor SOX30 is a key regulator of mouse spermiogenesis. The Company of Biologists Ltd/Development. 145:164723.